dikiy-donald.ru

Дезинфекция воды от кишечной палочки спб
 
 
      В начало Новости Дальнозоркость О сайте      
 
 
 
Навигация
  • Гипертония
  • Терапия
  • ЛФК
  • Радикулит
  • Сколеоз
  • Флеболог
  • Мануальная терапия
  • Омоложение
  •  

    Новое:
    12.02.2015 Чем кормить ребенка при выпадение прямой кишки

    05.03.2015 Играть футбол на двоих бесплатно головами

    15.02.2015 От морщин украинская косметика отзывы

     

    Ссылки по теме
    Как лечить головные боли дистонии?
    На правой ноге около большого пальца воспалился сустав что делать
    Как получить инсулиновую помпу в ставропольском крае
    Купить носочки для педикюра 43 размера
     

     
    Дезинфекция воды от кишечной палочки спб
         
         
     
    Главная >  Публикации 

     


    Например:

    а) исследование смывов на стафилококки проводят при обследовании кремово-кондитерских цехов, столовых и ресторанов, молочных кухонь и других пищеблоков, обращая особое внимание на контроль рук персонала; б) общую микробную обсемененность можно определить для установления эффективной обработки посуды, а также при оценке моющих и дезинфицирующих средств.

    Методика посева смывов на бактерии группы кишечных палочек

    При плановых санитарно-гигиенических обследованиях для выявления БГКП производят посевы смывов на среды Кесслера с лактозой или Кода, при этом в пробирку со средой опускают тампон и переносят оставшуюся смывную жидкость.

    Посевы на средах Кесслера или Кода инкубируют при 37°С, через 18—24 часа со среды Кесслера производят высев на плотную дифференциальную среду Эндо, со среды Кода высев производят в случае изменения окраски среды или ее помутнения.

    Посевы помещают в термостат при температуре 37 °С на 24 часа, после чего просматривают. Из колоний, подозрительных или типичных для БГКП, готовят мазки, окрашивают по Граму и микроскопируют. Обнаружение грамотри-цательных палочек указывает на наличие БГКП.

    Методика посева на общую бактериальную обсемененность

    Перед посевом смывов в пробирку с тампоном добавляют 5 мл 0,1% пептонной воды или изотонического раствора хлорида натрия. Тампон тщательно отмывают, после чего 1,0 мл смывной жидкости помещают в чашку Петри и заливают расплавленным МПА. Чашки помещают в термостат при 30°С. Предварительный подсчет выросших колоний производят через 48 часов, окончательный — через 72 часа. Количество колоний, выросших на чашке, умножают на 10 для определения общего количества бактерий, содержащихся на поверхности исследуемого предмета.

    Методика посева на золотистый стафилококк

    Для выявления золотистого стафилококка посев смывов производят на чашки с желточно-солевым агаром, непосредственно втирая посевной материал тампоном, затем последний погружают в пробирку с 6,5% солевым бульоном.

    Оценка результатов

    Обнаружение санитарно-показательных и условно-патогенных бактерий в смывах с поверхностей чистых, подготовленных к работе предметов, инвентаря и оборудования, а также рук персонала свидетельствует о нарушении санитарного режима и дает основание для проведения административных мер.

    § 12. Госпитальные инфекции

    Определение понятия. Госпитальными инфекциями являются эндогенные и экзогенные инфекции, приобретенные больными в медучреждениях под влиянием следующих факторов: снижение сопротивляемости организма, обусловленное болезнью или лечением, скопление и циркуляция возбудителей заболевания, селекция антибиотико-устойчивых или высоковирулентных возбудителей болезней, а также повышенные возможности контактов и заражения.

    Эпидемиология госпитальных инфекций. Первостепенное значение для возникновения и распространения госпитальных инфекций имеют: инфицирующая доза, устойчивость возбудителя, восприимчивость организма хозяина, пути передачи возбудителя и физические факторы окружающей среды (температура, относительная влажность воздуха, запыленность и т. д.).

    Резервуарами госпитальных инфекций являются:

    Кожа. У 10—20% (иногда до 40%) персонала и больных, находящихся в больнице, на коже обнаруживаются стафилококки. У 30% родильниц уже на пятый день после родов кожные покровы заселены стафилококками, а соски груди — почти у 60%. Кишечная палочка была выявлена у 13— 21% больных и у 6—9% персонала, энтерококки — соответственно у 27 и 22%.

    Волосы. Путем фаготипирования удалось установить, что при возникновении послеоперационных раневых инфекций волосы чаще бывают резервуаром стафилококков, чем носоглотка и кожа. В различных учреждениях число бациллоносителей находится в пределах 17—40% среди больных и 14—27% — среди персонала.

    Полость носа. На 5-й день после родов доля носителей золотистого стафилококка среди матерей достигает 40%, среди новорожденных— 80% и затем увеличивается до 99%. Во время бактериологического обследования сестер-практиканток было установлено, что 5% из них были постоянными, 50% периодическими и 31% спорадическими бактерионосителями золотистого стафилококка.

    Полость рта. Среди больных число носителей стафилококков в глотке может достигать 65%, у новорожденных на 5-й день после рождения заселение стафилококками ротовой полости достигает 60%.

    Глаза и пупок у новорожденных особенно чувствительны к инфекциям. На второй-третий день жизни глаза у них заселены золотистым стафилококком почти в 70% случаев.

    Влагалище. В 9—16% случаев заселено золотистым стафилококком.

    Кишечник. В фекалиях больных, находящихся в медицинских учреждениях, прежде всего обнаруживают: энте-ровирусы, сальмонеллы, энтеропатогенную кишечную палочку, шигеллы, синегнойную палочку, золотистый стафилококк, грибы рода кандида. Среди детей до 5 лет, а также среди медицинских сестер, ухаживающих за грудными детьми, частота носительства сальмонелл— 0,2%, шигелл— 0,4%, энтеропатогенной кишечной палочки — 0,15—0,2%. Синегнойная палочка выделяется у здоровых людей в 1—3% случаев, у госпитализированных больных — в 18%, золотистый стафилококк — у здоровых в 20—30% случаев.

    Таким образом, в зависимости от вида микробов, основного заболевания и врачебного вмешательства большое значение в распространении госпитальных инфекций имеет микрофлора секретов носа и глотки, кожи, кишечника и мочеполового тракта.

    Типичные места обитания микроорганизмов, часто встречающихся в медицинских учреждениях

    Местообитания

    Микроорганизмы

    Мочевые катетеры

    Кишечная палочка, фекальный стрептококк, протей, энтеробактеры, клеб-сиелла, синегнойная палочка, золотистый стафилококк, кандида

    Инструменты для внутривенного введения

    Грамотрицательные бактерии, энтеро-бактерии, флавобактерии, синегнойная палочка, золотистый стафилококк, вирус гепатита В

    Аппараты для искусственного дыхания

    Грамотрицательные бактерии, псевдомонады, золотистый стафилококк, стрептококк

    Системы, в которых используется вода (увлажнители, вентиляторы, ионизаторы, дистилляторы, ингаляторы), приборы для гидродиализа и гидротерапии

    Грамотрицательные бактерии и их токсины, ацинетобактеры, серрация, аэромонады, клебсиелла, вирус гепатита В

    Антисептики

    Грамотрицательные бактерии, псевдомонады, флавобактерии, ацинетобактеры, клебсиелла, серрация

    § 13. Основные мероприятия в профилактике внутрибопьничных инфекций

    Эффективная профилактика внутрибольничных инфекций должна учитывать решение многокомпонентной задачи, которая включает следующее:

    1) планирование и расположение основных функциональных блоков в лечебно-профилактических учреждениях;

    2) исключение аэрогенной инфекции;

    3) соблюдение правил личной гигиены;

    4) дезинфекция и стерилизация;

    5) организация уборки отделений;

    6) тактика ограничения антибиотиков;

    7) бактериологический контроль комплекса санитарно-гигиенических мероприятий в лечебно-профилактических учреждениях.

    Планирование и расположение основных функциональных блоков

    Профилактика внутрибольничных инфекций в стационарах хирургического профиля и акушерских стационарах начинается с планирования и расположения основных функциональных блоков (зон) отделения. Основные условия профилактики госпитальных инфекций: разделение палат и операционного блока, родильного отделения с родильным залом, палатами для новорожденных и грудных младенцев. Между ними должен быть шлюз-тамбур, через который в операционную (родильный зал) не должны попадать персонал отделения и постели больных.

    Необходимы 3 тамбура: для больных (рожениц), для персонала и для доставки и выноса аппаратуры. Тамбуры для персонала должны быть большими. В нечистой зоне размещаются туалеты и душевые. При переходе в чистое внутреннее помещение должно находиться устройство для дезинфекции рук.

    Центральное место в антимикробном режиме любого отделения занимает разделение асептической (чистой) и септической (гнойной, нечистой) зон, которые должны располагаться в разных помещениях. Если это требование выполнить невозможно, операции по поводу гнойных процессов производят в специально выделенные дни с последующей тщательной дезинфекцией операционного блока и всего оборудования.

    В септических операционных соблюдаются такие же условия, как и в асептических (чистых). Необходимо предупредить перенос бактерий в отделение и асептическую операционную.

    Использованная в операционной (родзале) одежда снимается на выходе из операционной (родзала) в чистое внутреннее помещение в шлюзе для персонала и складывается в мешок. Одежда и белье, используемые в отделении, должны сниматься в шлюзе при входе в операционную (родильный зал).

    Персонал, участвующий в операции, заходит в операционную через умывальную; больной, анестезиолог и его помощники попадают в операционную через специальную проходную.

    В больших операционных необходимо оборудовать место для аппаратов. Подавать стерильные материалы лучше по собственному коридору.

    Комнату для пробуждения оперированного после наркоза необходимо расположить вне операционного блока, но недалеко от него.

    Операционный блок оборудуют вентиляционными установками с преобладанием притока воздуха над вытяжкой. В приточную вентиляционную систему устанавливают бактериальные фильтры.

    Исключение аэрогенной инфекции

    С целью исключения аэрогенной инфекции (передающейся через воздух), для снижения микробной обсемененности помещений, их необходимо подвергать ультрафиолетовому облучению. Поэтому все помещения оперблока (в том числе и тамбур) должны быть оснащены источниками бактерицидного ультрафиолетового облучения (потолочные или настенные облучатели: ОБН-200 или ОБН-350 — один облучатель на 30 м3 помещения; ОБН-150 на 30 м3 или ОБН-300 на 60 м3 помещения на 2 часа). Во время облучения помещений необходима защита кожи и глаз больных и сотрудников от действия ультрафиолетовых лучей.

    Соблюдение правил личной гигиены. Условия работы в операционном блоке, в родильном отделении

    Весь работающий персонал после полного медицинского осмотра в соответствии с приказом МЗ СССР № 555 от 29 сентября 1989 г. «О совершенствовании системы медицинских осмотров трудящихся и водителей индивидуальных транспортных средств» и бактериологического обследования на но-сительство патогенного стафилококка при поступлении на работу должен быть взят на диспансерное наблюдение для своевременного выявления и изменения кариозных зубов, хронических воспалительных процессов в носоглотке, своевременного выявления носителей патогенного стафилококка и их санации. Лица с открытыми воспалительными процессами или признаками недомогания к работе в операционном блоке, родильном отделении не допускаются.

    Роль защитной одежды в операционных и родзалах

    Первое средство ограничения рассеивания микробов с поверхности тела и волос в окружающей среде — защитная одежда в операционной, родильном отделении.

    Все лица, участвующие в операции, надевают операционное белье: полотняную блузу и брюки, тапочки, халат, шапочку, закрывающую волосы. Перед входом в оперблок халат снимают, надевают маску, бахилы и приходят в предоперационную, где обрабатывают руки, надевают стерильный халат, перчатки, маску.

    Полотняную блузу и брюки и сверху стерильный халат носят только в операционной и каждый день их меняют, а также маску и шапочку.

    В родильном зале врачи и акушерки носят специальные для этого отделения халаты, которые ежедневно меняются, шапочку, закрывающую волосы, стерильные перчатки, 4-слойную маску.

    Все другие лица перед входом в операционную надевают 4-слойную марлевую маску, убирают волосы под шапочку, надевают бахилы, которые на выходе снимают и сбрасывают в бак или ведро с крышкой.

    Больного перед операцией доставляют в оперблок на каталке отделения. Перед операционным блоком, желательно в тамбуре, больного перекладывают на каталку операционного блока, на которой его подвозят к операционному столу. Ежедневно каталку обрабатывают 1 % раствором хлорамина или другого дезсредства.

    Стол для стерильного инструментария покрывают стерильной простыней непосредственно перед операцией, раскладывают на ней стерильный инструментарий и закрывают сверху стерильной простыней.

    Перевязочный материал и инструментарий, использованный в ходе операции, белье, использованное в процессе приема родов, собирают в специально выделенные емкости.

    Гигиена рук. Профилактика микробной обсемененности рук, кожи и ран

    Цель дезинфекции рук персонала, участвующего в операции, приеме родов, — уничтожение бактерий на поверхности кожи и торможение их роста на несколько часов.

    Руки моют водой с мылом в течение 1 минуты, ополаскивают водой для удаления мыла и вытирают насухо стерильной салфеткой. Затем руки в течение 1 минуты обрабатывают рецептурой С-4 (смесь перекиси водорода и муравьиной кислоты) в эмалированном тазу, вытирают стерильной салфеткой и надевают стерильные перчатки.

    Накануне операции, если позволяет состояние больного, желательно его выкупать, включая голову, под душем теплой водой с мылом. Операционное поле лучше выбрить непосредственно перед операцией в предоперационной. После каждого использования бритву следует дезинфицировать. Кожу операционного поля без предварительного мытья обрабатывают двукратным смазыванием йодоната или йодо-пирина 1 % по свободному йоду.

    Кожу операционного поля необходимо изолировать специальной пленкой.

    Дезинфекция и стерилизация

    Хирургические инструменты, соприкасающиеся с кровью, гноем и другими биологическими жидкостями больного, должны быть обработаны по специальной схеме, которая включает 3 этапа (ОСТ 42-21-2-85):

    I этап — дезинфекция;

    II этап — предстерилизационная очистка;

    III этап — стерилизация.

    Инструменты, шприцы, соприкасающиеся с кровью или гноем, сразу дезинфицируют.

    Существуют термический и химический методы дезинфекции.

    Термический — кипячение в дистиллированной воде 30 минут и 2% растворе питьевой соды 15 минут.

    Химический — погружение полностью в хлорамин.

    Для капельных, вирусных и гнойных инфекций — 1 % — 30 минут.

    При туберкулезе — 5% — 4 часа.

    При вирусных гепатитах и СПИДе — 3% — 1 час.

    Перекись водорода при гнойной инфекции — 3 % — 8 минут, при туберкулезе— 3% — 3 часа, при гепатите 4% — 1,5 часа.

    Дезинфицирующий раствор применяется однократно. После погружения в дезраствор медицинский инструментарий промывают проточной водой до полного исчезновения запаха дезсредства.

    Предстерилизационная очистка — удаление белковых, жировых и лекарственных загрязнений, остатков крови.

    а) погружение в раствор, 1 л которого содержит 170 мл 3 % перекиси водорода, 5 г моющего средства; t — 50°С, экспозиция — 15 минут; б) механическая мойка (ерш, ватный тампон — 30 с); в) промывание проточной водой — 10 минут; г) промывание дистиллированной водой — 3 раза; д) сушка.

    Контроль качества предстерилизационной очистки медицинского инструментария проводят путем постановки:

    а) фенолфталеиновой пробы (на качество отмывки от синтетических средств «Лотос», «Астра», «Айна»); б) амидопириновой пробы.

    Фенолфталеиновая проба: на ватный тампон наносят несколько капель спиртового раствора фенолфталеина и этим тампоном протирают испытуемый инструментарий. Появление розового окрашивания указывает на некачественную отмывку от моющих средств.

    Амидопириновая проба: смешать равные количества 5 % спиртового раствора амидопирина и 5% перекиси водорода, добавить несколько капель 30% уксусной кислоты. На контролируемое изделие нанести 2—3 капли реактива. При наличии кровяных загрязнений появляется сине-зеленое окрашивание. Изделия, дающие положительную пробу на кровь или на моющее средство, обрабатывают повторно до получения отрицательного результата.

    Дальнейшая стерилизация хирургического инструментария, белья, перевязочного материала и т. д. осуществляется следующим способом:

    паровым — 132°С — 20 минут 2 атм. для металла, 120°С — 45 минут 1 атм. для резины;

    воздушным — 180°С — 1 час; 160°С — 2,5 часа; химическим — перекись водорода 6% — 18°С — 6 часов, 6% - 50°С - 3 часа.

    § 14. Санитарно-микробиологическое исследование объектов окружающей среды в лечебно-профилактических учреждениях

    Объектами исследования при проведении бактериологического контроля лечебно-профилактических учреждений являются:

    воздушная среда;

    различные объекты внешней среды;

    хирургический инструментарий;

    шовный материал;

    руки хирургов и кожа операционного поля. Бактериологическое исследование микробной обсемененности предметов внешней среды предусматривает выявление стафилококка, синегнойной палочки, бактерий группы кишечных палочек и патогенных грибов.

    Отбор проб

    Взятие смывов производят стерильным ватным тампоном на палочках, вмонтированных в пробирки, или марлевыми салфетками размером 5x5 см. Для увлажнения тампонов в пробирки с тампонами наливают по 2,0 мл стерильного физиологического раствора.

    Для выделения стафилококков посев делают непосредственно на чашку Петри с желточно-солевым агаром, для выделения бактерий группы кишечных палочек — посев на среду Эндо (дальнейшие исследования по соответствующим схемам).

    Для обнаружения патогенных грибов производят посев на среду Сабуро, наблюдают 5 суток при 21°С. Кроме того, производят посевы в среды накопления — для стафилококков в 6,5% хлористого натрия, для бактерий группы кишечных палочек — в 10—20% желчный бульон. Через сутки инкубирования при 37°С делают пересев на среду Эндо и жел-точно-солевой агар. При обнаружении подозрительных колоний производят их микроскопию и далее исследуют по соответствующим схемам.

    Для выявления синегнойной палочки специальные посевы можно не производить, так как она дает ползущий рост с характерным запахом земляничного мыла на среде Эндо.

    Правила отбора проб для контроля стерильности в лечебно-профилактических учреждениях

    Забор проб производят в стерильные емкости с соблюдением строжайших правил асептики.

    Посев в обязательном порядке производят в три питательные среды:

    сахарный бульон Хоттингера (0,5 и 1% глюкоза);

    тиогликолевую среду;

    бульон Сабуро.

    При посеве изделия или его части непосредственно в питательную среду следует соблюдать следующее условие — среды должно быть достаточно для полного погружения изделия.

    Перед посевом емкость с отобранными образцами протирают стерильной марлевой салфеткой, обильно смоченной 6% раствором перекиси водорода, и оставляют на 30 минут. Затем вносят в бокс. За 1,5—2 часа до начала работы в боксе и предбокснике на 1—1,5 часа включают бактерицидные лампы.

    Перед входом в бокс работники лаборатории тщательно моют руки теплой водой с мылом и щеткой, вытирают стерильным полотенцем, надевают в предбокснике на ноги бахилы, стерильные халаты, 4-слойные маски, шапочки, стерильные перчатки.

    Посевы в бульон Хоттингера и тиогликолевую среду выдерживают в термостате при температуре 37°С, среду Сабуро — при температуре 20—22°С.

    Посевы инкубируют в термостате в течение 14 суток.

    Материал стерилен при отсутствии роста во всех посевах. Материал не стерилен при росте микрофлоры.

    Бактериологический контроль эффективности обработки кожи операционного поля и рук хирургов

    Смывы с кожи операционного поля и рук хирургов производят стерильными марлевыми салфетками размером 5x5 см2, смоченными в физиологическом растворе. Марлевой салфеткой тщательно протирают ладони, околоногтевые и межпальцевые пространства обеих рук. После забора проб марлевую салфетку помещают в широкогорлые пробирки или колбы с раствором нейтрализатора (воды или физиологического раствора) и стеклянными бусами, встряхивают в течение 10 минут, производят отмыв марлевой салфетки. От-мывную жидкость засевают глубинным способом по 0,5 мл на 2 чашки Петри с мясопептонным агаром, а марлевую салфетку— 0,5% сахарный бульон. Посевы инкубируют при 37°С в течение 48 часов.


    Далее:

     

    263. Ромашка аптечная.

    IGnatIA игнация горькая.

    Впечатления электротехника, 27 Лет.

    Вместо заключения.

    Евгеника.

    268. Свёкла обыкновенная.

    Принципы натуральной гигиены.

     

    Главная >  Публикации 

    0.0297

    Источник: http://mewo.ru/tumb/16/438/

     
         

     
     
     
     
         
      © 2014 dikiy-donald.ru - Дезинфекция воды от кишечной палочки спб